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          當(dāng)前位置:首頁技術(shù)文章如何降低非特異性擴(kuò)增?

          如何降低非特異性擴(kuò)增?

          更新時(shí)間:2024-11-25點(diǎn)擊次數(shù):1130

          一、擴(kuò)增方式

          擴(kuò)增方式一般有兩種,對(duì)稱擴(kuò)增和不對(duì)稱擴(kuò)增。

          1、對(duì)稱擴(kuò)增

          使用等量的引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增產(chǎn)物量隨著PCR循環(huán)呈指數(shù)增長,一般的PCR,使用的都是這種方式。

          由于TaqDNA聚合酶具有5-3外切酶活性,在PCR擴(kuò)增的過程中會(huì)水解探針,導(dǎo)致探針被耗盡,無法用于熔曲分析;若使用抗酶切修飾的探針,可一定程度降低水解,但由于探針阻礙了聚合酶通過,擴(kuò)增效率會(huì)大幅下降。

          對(duì)稱擴(kuò)增產(chǎn)生的互補(bǔ)雙鏈,會(huì)與探針競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合靶序列,不利于探針結(jié)合到靶序列上,熔曲分析可能會(huì)出現(xiàn)異常。

          優(yōu)點(diǎn):靈敏度高

          缺點(diǎn):一般搭配使用媒介探針進(jìn)行檢測(cè),而其他類型探針由于被切割而無法使用

          2、不對(duì)稱擴(kuò)增

          上下游引物中,有一條引物為過量使用,一條引物xian使用,在PCR擴(kuò)增的前期,擴(kuò)增產(chǎn)物量呈指數(shù)增長,待xian引物耗盡,擴(kuò)增產(chǎn)物量呈線性增長,產(chǎn)生大量的單鏈用于探針的結(jié)合和熔解曲線分析。

          LATE-PCR方法中,由于考慮到引物濃度對(duì)引物Tm值的影響xian引物由于濃度低,對(duì)模板的結(jié)合效率下降,從而影響不對(duì)稱擴(kuò)增前期的擴(kuò)增效率,因此對(duì)xian引物的Tm值進(jìn)行了增加(即加多幾個(gè)堿基)。

          優(yōu)點(diǎn):不會(huì)消耗探針,探針可用于后續(xù)熔解曲線分析

          缺點(diǎn):靈敏度低,一般用于基因檢測(cè),不適用于病原檢測(cè)(病原檢測(cè)需要高靈敏度)

          二、如何降低非特異性擴(kuò)增?

          1HANDS技術(shù)Homo-Tag Assisted Non-Dimer System,同源加尾無二聚體系統(tǒng))

          通過對(duì)引物添加標(biāo)簽,當(dāng)形成引物二聚體后,由于首尾的序列互補(bǔ),會(huì)形成發(fā)夾結(jié)構(gòu),不再作為模板進(jìn)行擴(kuò)增。

          2DPO引物Dual Priming Oligonucleotide,雙啟動(dòng)寡核苷酸)

          DPO引物主要由三個(gè)部分組成,長的 5'端片段、短的3'端片段、中間起連接作用的聚脫氧次黃嘌呤(poly I)。由于脫氧次黃嘌呤與天然堿基結(jié)合較弱,因此相當(dāng)于與模板DNA形成了一個(gè)氣泡結(jié)構(gòu)。

          即使DPO引物的較長的 5'端部分結(jié)合到了非靶序列部位,但由于熱力學(xué)限制,3’端部分阻止了非特異結(jié)合并有效地阻斷了延伸。同樣由于熱力學(xué)限制,單獨(dú)的3'端部分在PCR退火溫度下不能結(jié)合到靶序列上。從而減少引物二聚體的擴(kuò)增。

          3、touch-down技術(shù)

          即降落PCR,在退火階段,采用逐級(jí)降溫的方式,能有效減少非特異性擴(kuò)增。溫度較高時(shí),由于非特異性結(jié)合的結(jié)合力較弱,不利于非特異性擴(kuò)增,特異性擴(kuò)增占優(yōu)勢(shì)。


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