免疫熒光（IF）實驗常見問題有哪些？解決方案有什么？

免疫熒光技術是根據抗原抗體反應的原理，先將已知的抗原或抗體標記上熒光素，制成熒光抗體，再用這種熒光抗體（或抗原）作為探針檢測組織或細胞內的相應抗原（或抗體）。那么你知道在免疫熒光（IF）實驗中會遇到那些問題以及這些問題的解決方法嗎？讓我們一起來看看吧！

問題一：目標蛋白熒光很弱，導致組間差異不顯著，導致假陰性結果

解決方案：出現這種情況后，首先檢查抗體是否正確，是否適用于預處理的組織。有些抗體只適用于冰凍切片，但如果應用于石蠟切片，則會出現弱標記或無標記現象。然后通過文獻了解目的蛋白在組織或細胞中的表達豐度。此外，如果抗體修復不足，抗原表位未完quan暴露，也會出現弱標記。例如，雖然大多數抗體在酸性環境中修復，但也有少數抗體需要在堿性環境中修復。建議查看抗體說明書，嚴格按照其修復條件進行實驗。

問題二：目標蛋白的熒光過強，甚至形成非特異性的標記，一些背景染色可能被誤認為陽性區域，造成假陽性結果

解決方法：適當降低一抗或者二抗的濃度，增加漂洗時間，一般能夠有所改善

問題三：DAPI 染細胞核時，加入的試劑太多，造成高背景染色

解決方法：滴加的 DAPI 不要太多，只需覆蓋上薄薄的一層即可。

問題四：組織切片預處理不當或采用石蠟切片，導致高背景染色

解決方案：如果組織切片，尤其是石蠟切片脫蠟環節不徹di，也會造成區域性的非特異性標記。建議脫蠟一定要徹di，脫蠟前充分烤片也可以幫助脫蠟。實驗過程中，玻片干燥了，同樣會造成高背景或大面積的非特異性標記。漂洗環節和抗體孵育環節最容易出現干片現象，尤其是大批量實驗時，一定要注意。使用免疫組化專用筆畫個圈，可以有效改善。

問題五：采集圖像過程不當，導致原始圖像不佳，直接影響后續半定量分析

解決方案：采集圖像時不要對每一張圖像都加上標尺，否則后期采用 Image J或者 IPP 進行分析時，這些標尺會對結果造成影響。采集圖像時，速度要快。如果激發光很長時間對準目標區域，此區域內的熒光衰減會極快因此，目標區域較小時，一定要盡量快速采集，減少人為實驗誤差。

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